产品组分

运输与保存
常温运输。常温保存，有效期12个月。

使用方法
一、 样品裂解
1. 贴壁培养的细胞
(1) 移除培养基，PBS洗一次；
(2) 在培养板中加入500 μL的Lysis Buffer (＜3×10^6
个细胞)，水平放置片刻，再用枪头吹吸或搅拌数次，直至
细胞裂解。转移至1.5mL离心管中，用力反复吹打数次，充分裂解直到看不到细胞团为止，然后进
行步骤二；
注：(1) 细胞样品建议用6孔板或35mm培养皿培养细胞，培养至合适的密度进行 RNA提取 (24孔板培养的细
胞培养至90%以上的细胞密度也可使用)。 (2) 不方便直接裂解的培养容器，可以使用细胞刮刮下细胞或
者胰mei消化后，将细胞收集到离心管中。 (3) 对于T细胞/B细胞等体积很小、RNA含量很低的细胞，建
议增加细胞数到至少1×10^6
以上。
2. 悬浮培养的细胞
(1) 取1~3×106
个细胞的悬液至1.5 mL离心管，1000 g离心1 min收集细胞；
(2) 去上清，加入500 μL的Lysis Buffer，用力吹吸10次，vortex 10 s，保证细胞裂解，看不到细胞团，
然后进行步骤二。
3. 细菌细胞
5,000 rpm离心3 min收集适量的菌体(＜5×10^8
)，弃去上清，加入100μL含有溶菌mei的TE buffer，吹打混
匀，室温静置孵育数分钟。加入500 μL的Lysis Buffer，剧烈振荡20 s，12,000rpm离心1~2 min，取上清，然
后进行步骤二。
4. 动物组织（适合肠、肝、脑、脾、肿瘤，不适用肺、心、皮肤等坚硬组织）
(1) 匀浆器匀浆：切取新鲜组织10~50mg至1.5 mL离心管中，加入500 μL的Lysis Buffer，用组织匀浆机
匀浆组织，直至无肉眼可见的组织块。12,000 rpm离心1~2 min。
(2) 液氮研磨：在液氮中将10~50mg组织充分研磨，将研磨成粉的样品转移至离心管中，加入加入500 μL的
Lysis Buffer，剧烈振荡20 s，12,000rpm离心1~2 min。
(3) 转移不超过400μL上清至新离心管中。切勿吸取管底沉淀和泡沫。
二、RNA提取
1. 细胞样品
较精确估计裂解液体积，向细胞裂解液中加入等体积的无水乙醇，将离心管剧烈颠倒几次，或用移液器
用力吹吸数次，充分混匀，然后将液体转移至离心柱上，进行步骤3。【注】：可能会产生沉淀,这是正常现象
，不影响提取过程，继续后续操作。
2. 组织样本
较精确估计裂解液体积，向裂解液中加入0.5倍体积的无水乙醇（或等体积的70%乙醇），将离心管剧烈
颠倒几次，或用移液器用力吹吸数次，充分混匀，然后将液体转移至离心柱上。
3. 7,000 rpm离心1 min（如离心柱上仍有液体残留可增加转速至12,000 rpm）,弃废液。
4. 向RNA柱中加入500 μL的Wash Buffer，12,000 rpm离心1 min。
5. 倒掉废液，将RNA柱装回收集管，12,000 rpm空管离心1 min，去除残留的Wash Buffer。
6. 取出RNA吸附柱，放入一个RNase-free的1.5mL离心管中，开盖晾干1 min。向RNA柱的膜中心部位加入
25~50uL的Elution buffer，室温静置1 min。
7. 12,000 rpm离心1 min。样品可长期保存至-80℃。【注】：加洗脱液体积不应少于25uL，否则会影响回
收率，为了获得更大浓度的RNA，可将离心的RNA溶液重新加入到吸附柱，重复洗脱一遍。
注意事项
1. 本产品仅限于科学实验研究使用，不得用于临床诊断、治疗等领域。
2. 加入Lysis Buffer后，一定要充分振荡，保证RNA提取的效果；如果混合液非常粘稠难以转移，明显样品
量过多，增加Lysis buffer用量或减少样本用量。
3. 细胞或组织裂解产物，上柱前需要加入无水乙醇，充分混匀之后加入离心柱离心。
4. 使用的样本避免反复冻融，以免影响RNA的产率和质量。
5. 关于RNA纯度：OD260/OD280和 OD260/OD230比值是衡量 RNA 纯度的指标，高质量的RNA，
OD260/OD280的值在1.9-2.2之间，OD260/OD230大于 1.8（比较纯净的比值大于2.0）。本试剂盒提取
RNA，使用Nanodrop等微量分光光度计测定OD 260/280在1.90~2.2之间，OD260/230在2.0~2.2之间均属
正常。